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產(chǎn)品描述
細(xì)胞凋亡中染色體DNA的斷裂是個(gè)漸進(jìn)的階段性過(guò)程。染色體DNA首先在內(nèi)源性的核酸水解酶的作用下降解為50-300 kb的大片段,然后大約30%的染色體DNA在Ca2+和Mg2+依賴的核酸內(nèi)切酶作用下,在核小體單位之間被隨機(jī)切斷,形成180-200 bp核小體DNA多聚體。因此在細(xì)胞凋亡晚期,DNA會(huì)被降解為180-200 bp的片段,斷裂的基因組DNA上暴露出大量的3'-OH末端。末端脫氧核糖核苷酸轉(zhuǎn)移酶(Terminal Deoxynucleotidyl Transferase, TdT)是一種不依賴于模板的DNA聚合酶,可以催化脫氧核苷酸結(jié)合到斷裂的DNA分子3'-OH末端。因此TUNEL (TdT mediated dUTP Nick End Labeling)細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒可以用來(lái)檢測(cè)組織細(xì)胞在凋亡晚期過(guò)程中細(xì)胞核DNA的斷裂情況。其原理是在TdT酶的作用下,在基因組DNA斷裂時(shí)暴露出的3′-OH末端摻入CF640-dUTP,從而可以用熒光顯微鏡或流式細(xì)胞儀檢測(cè)(CF640激發(fā)642 nm,發(fā)射662 nm)。本試劑盒應(yīng)用范圍廣,適用于石蠟組織切片,冰凍組織切片、細(xì)胞爬片、細(xì)胞涂片等的細(xì)胞凋亡檢測(cè)。
儲(chǔ)存與運(yùn)輸
冰袋(wet ice)運(yùn)輸;
本試劑盒儲(chǔ)存在-20℃,CF488-dUTP Labeling Mix需避光儲(chǔ)存于-20℃,有效期12個(gè)月。
實(shí)驗(yàn)前準(zhǔn)備
1. PBS磷酸鹽緩沖液;
2. 固定液:溶于PBS的4%多聚甲醛,pH 7.4;
3. 破膜液:溶于0.1%檸檬酸鈉的0.1% Triton X-100;
4. 配制含2% Triton X-100的PBS;配制含1% Triton X-100及5 mg/mL BSA的PBS;
5. 如需染核,需自備DAPI(2 μg/mL)或PI(1 μg/mL);
6. 如需陽(yáng)性對(duì)照實(shí)驗(yàn),需自備DNase I;
7. 如果用流式細(xì)胞儀,自備PI染液和RNase A(DNase free);
8. 操作時(shí)請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服,佩戴一次性手套。
操作步驟
一、樣品準(zhǔn)備
A. 石蠟包埋組織切片
1. 室溫下將石蠟組織切片放入二甲苯中浸泡5-10 min,重復(fù)2-3次;然后無(wú)水乙醇浸泡5 min,重復(fù)2次;最后用梯度乙醇(85%、75%、雙蒸水)各浸泡1次,每次5 min;
2. 用PBS輕輕潤(rùn)洗切片,并去掉樣本周圍多余液體,使用組化筆沿組織外圍輪廓畫(huà)一個(gè)與組織間隔2-3 mm的小圈,便于下游通透性處理和平衡標(biāo)記操作,在實(shí)驗(yàn)過(guò)程中,切勿讓樣品干燥,處理好的樣本放在濕盒中保持樣本的濕潤(rùn);
3. 配制Proteinase K工作液:按1:9的比例,用PBS作為稀釋液來(lái)稀釋Proteinase K(200 μg/mL)原液,使其終濃度為20 μg/mL;
4. 每個(gè)樣本上滴加100 μL上述Proteinase K工作液,使其被全部覆蓋,37℃孵育20 min;
(注:Proteinase K處理主要有助于組織和細(xì)胞后續(xù)步驟的染色試劑通透,其孵育時(shí)間過(guò)長(zhǎng)過(guò)短都會(huì)影響后續(xù)標(biāo)記效率,為得到更好的結(jié)果,可以優(yōu)化Proteinase K孵育的時(shí)間)
5. 用PBS溶液浸潤(rùn)清洗樣本3次,每次5 min(Proteinase K需洗滌干凈,否則會(huì)干擾后續(xù)的標(biāo)記反應(yīng))。處理后的樣本放在濕盒中保持樣本的濕潤(rùn);
6. (可選步驟)去掉樣本上多余的液體,將適量破膜液滴加到組織上,充分浸潤(rùn)組織,室溫處理20 min;破膜處理完成后同樣的用PBS溶液潤(rùn)洗樣本3次,每次5 min;處理后的樣本放在濕盒中保持樣本的濕潤(rùn)。
B. 組織冰凍切片
1. 將玻片浸沒(méi)在4%多聚甲醛溶液(溶于PBS)中固定,室溫下孵育10-15 min;
2. 片子從固定液中取出后,通風(fēng)櫥中自然晾干;
3. 將玻片放入純水或PBS中潤(rùn)洗,去掉玻片上殘存的固定液;
4. 用組化筆沿著組織外圍輪廓畫(huà)一個(gè)與組織間隔2-3 mm的小圈,便于下游通透性處理和平衡標(biāo)記操作;在實(shí)驗(yàn)過(guò)程中,切勿讓樣品干燥,處理好的樣本放在濕盒中保持樣本的濕潤(rùn);
5. 配制Proteinase K工作液:按1:9的比例,用PBS作為稀釋液來(lái)稀釋Proteinase K(200 μg/mL)原液,使其終濃度為20 μg/mL;
6. 每個(gè)樣本上滴加100 μL上述Proteinase K工作液,使其被全部覆蓋,室溫孵育10 min;
(注:Proteinase K處理主要有助于組織和細(xì)胞后續(xù)步驟的染色試劑通透。其孵育時(shí)間過(guò)長(zhǎng)過(guò)短都會(huì)影響后續(xù)標(biāo)記效率;未得到更好的結(jié)果,可能需要優(yōu)化Proteinase K孵育的時(shí)間)
7. 用PBS溶液潤(rùn)洗樣本2-3次,去掉多余液體(Proteinase K需洗滌干凈,否則會(huì)干擾后續(xù)的標(biāo)記反應(yīng)),處理后的樣本放在濕盒中保持樣本的濕潤(rùn);
8. (可選步驟)將適量破膜液滴加到組織上,充分浸潤(rùn)組織,室溫處理20 min,破膜處理完成后同樣的用PBS溶液潤(rùn)洗樣本,去掉多余液體,處理后的樣本放在濕盒中保持樣本的濕潤(rùn)。
C. 細(xì)胞爬片
1. 在Lab-Tek載玻片小室(Chamber Slides)上培養(yǎng)貼壁細(xì)胞,在凋亡誘導(dǎo)處理之后,用PBS輕輕潤(rùn)洗2遍載玻片;
2. 向每個(gè)載玻片小室中加入適量的4%多聚甲醛溶液(溶于PBS)固定,室溫下孵育20 min;
3. 去掉固定液,加入PBS清洗3次,每次5 min;
4. 每個(gè)樣本浸于破膜液中,室溫孵育5 min進(jìn)行通透處理;
5. 在盛有PBS溶液的敞口燒杯中浸沒(méi)清洗樣本2-3次;
6. 輕輕去掉多余液體,并用濾紙小心吸干載玻片上樣本周圍的液體。處理后的樣本放在濕盒中保持樣本的濕潤(rùn)。
D. 細(xì)胞涂片
1. 以約2×107個(gè)細(xì)胞/mL的濃度將細(xì)胞重懸于PBS中,吸取50-100 μL細(xì)胞懸液滴于防脫玻片上,使用一片潔凈的載玻片輕柔涂開(kāi)細(xì)胞懸液;
2. 將玻片浸入裝有4%新鮮配制于PBS中的多聚甲醛的染色缸中,固定細(xì)胞,在4℃放置25 min;
3. 將玻片浸入PBS中,室溫放置5 min浸洗,重復(fù)一次;
4. 輕輕去掉多余液體,并用濾紙小心吸干玻片上樣本周圍多余的液體,用組化筆沿著細(xì)胞外圍輪廓畫(huà)一個(gè)小圈,便于下游透性處理和平衡標(biāo)記操作,在實(shí)驗(yàn)過(guò)程中,切勿讓樣品干燥;
5. 每個(gè)樣本浸于破膜液中,室溫孵育5 min進(jìn)行通透處理;
6. 在盛有PBS溶液的敞口燒杯中浸沒(méi)清洗樣本2-3次;
7. 輕輕去掉多余液體,并用濾紙小心吸干載玻片上樣本周圍的液體。處理后的樣本放在濕盒中保持樣本的濕潤(rùn)。
二、DNase I處理陽(yáng)性對(duì)照實(shí)驗(yàn)(可選步驟)
在樣本通透處理后,用DNase I處理樣本來(lái)準(zhǔn)備陽(yáng)性對(duì)照。
1. 將100 μL 1×DNase I Buffer(配制方法:取10 μL 10×DNase I Buffer,然后加入90 μL去離子水混勻)滴加到已通透的樣本上,室溫孵育5 min;
2. 輕輕去掉多余液體,加入100 μL含有DNase I(20 U/mL)的工作液(配制方法:取10 μL 10×DNase I Buffer,然后加入2 μL DNase I,再加入88 μL去離子水混勻),室溫孵育10 min;
3. 輕輕去掉多余的液體,并將載玻片在裝有PBS的染色缸中徹底洗3-4次。
(注:陽(yáng)性對(duì)照載玻片必須使用單獨(dú)的染色缸,否則陽(yáng)性對(duì)照載玻片上殘留的DNase I可能會(huì)在實(shí)驗(yàn)載玻片上引入高背景)
三、標(biāo)記與檢測(cè)
1. 平衡:每個(gè)樣本滴加50 μL Equilibration Buffer使其全部覆蓋待檢樣本區(qū)域,室溫孵育10 min;
2. 標(biāo)記液配制:在冰上解凍CF488-dUTP Labeling Mix和Equilibration Buffer,并按照Recombinant TdT enzyme:CF488-dUTP Labeling Mix:Equilibration Buffer=1 μL:5 μL:50 μL(1:5:50)比例混合足夠用于所有實(shí)驗(yàn)的TdT孵育緩沖液,具體實(shí)驗(yàn)使用試劑的體積可以根據(jù)玻片的大小進(jìn)行適當(dāng)?shù)缺壤{(diào)整;
3. 陰性對(duì)照體系:準(zhǔn)備一份不含Recombinant TdT enzyme的對(duì)照TdT孵育緩沖液,用ddH2O替代;
4. 標(biāo)記:盡量去掉平衡的Equilibration Buffer,然后在每份組織樣本上加入56 μL TdT孵育緩沖液,在37℃孵育1 h;注意不能干片,載玻片要避光;
5. 立即用PBS潤(rùn)洗組織樣本,清洗4次,每次5 min;
6. 用濾紙輕輕擦掉樣本周圍的PBS溶液;
7. 核染色:樣本在染色缸中染色,在黑暗中將載玻片浸入裝有DAPI溶液(用PBS新鮮配制并稀釋)的染色缸,室溫放置8 min;
8. 封片:樣本染色完成后,用PBS清洗組織樣本3次,每次5 min,然后輕輕去掉多余液體,滴加抗熒光淬滅封片劑封片;
9. 鏡檢:立即在熒光顯微鏡下分析樣本,載玻片注意避光,DAPI能將凋亡和未凋亡的細(xì)胞都染成藍(lán)色,只在凋亡的細(xì)胞核中才有CF488-dUTP摻入而定位的綠色熒光。
四、利用流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)懸浮細(xì)胞
1. 將待檢測(cè)細(xì)胞用PBS清洗兩次,4℃離心(500 g)然后重懸在500 μL PBS中;
2. 固定:向樣品中加入5 mL 1%用PBS配制的多聚甲醛溶液,固定細(xì)胞,冰上放置20 min;
3. 細(xì)胞在4℃,300 g離心10 min,去上清并用5 mL PBS重懸兩次,最后用500 μL PBS重懸細(xì)胞;
4. 通透:向樣品中加入5 mL冰上預(yù)冷的70%乙醇,-20℃孵育4 h,通透細(xì)胞;
(注:細(xì)胞也可用破膜液室溫5 min進(jìn)行通透)
5. 細(xì)胞用300 g離心10 min后用5 mL PBS重懸,再次離心后用1 mL PBS 重懸;
6. 平衡:轉(zhuǎn)移約2×106個(gè)細(xì)胞至1.5 mL的微量離心管,300 g離心10 min,去上清,并用80 μL Equilibration Buffer重懸,室溫孵育5 min;
7. 標(biāo)記液配制:在冰上解凍CF488-dUTP Labeling Mix和Equilibration Buffer,并按照Recombinant TdT enzyme:CF488-dUTP Labeling Mix:Equilibration Buffer=1 μL:5 μL:50 μL(1:5:50)比例混合足夠用于所有實(shí)驗(yàn)和可選陽(yáng)性對(duì)照反應(yīng)的TdT孵育緩沖液;
8. 標(biāo)記:細(xì)胞用300 g離心10 min,去上清將沉淀重懸在56 μL TdT孵育緩沖液中,37℃孵育1 h,避光。每隔15 min用微量移液器輕輕重懸細(xì)胞;
9. 反應(yīng)完成后加入1 mL 20 mM EDTA終止反應(yīng),用微量移液器輕柔混勻;
10. 300 g離心10 min,去上清并將沉淀重懸在1 mL破膜液中,其中含5 mg/mL BSA,重復(fù)洗2次;
11. 核染色:300 g離心10 min,去上清并將細(xì)胞沉淀重懸在0.5 mL DAPI溶液中,其中包含250 μg無(wú)DNA酶的RNase A,在黑暗中室溫孵育細(xì)胞30 min;
12. 上機(jī)檢測(cè):流式細(xì)胞儀分析細(xì)胞,DAPI能將凋亡和未凋亡的細(xì)胞均染成藍(lán)色,只在凋亡的細(xì)胞核中才有CF488-dUTP摻入而定位的綠色熒光。
五、實(shí)驗(yàn)流程簡(jiǎn)圖
本產(chǎn)品僅供科研用途,不用于臨床診斷!
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